W celu otrzymania całkowitych histonów roślin i komórek tytoniu przeprowadzano
izolację chromatyny, z której następnie selektywnie ekstrahowano białka zasadowe,
należące w większości do grupy histonów. Do preparatyki przeznaczano 3 g liści
tytoniu, lub ok. 4 ml gęstej zawiesiny komórek (masa po odsączeniu ok. 3 g).
Procedurę prowadzono zgodnie z opisem Moehsa i współpracowników (1988). Materiał
homogenizowano w 200 ml buforu I (0,4 M sacharoza, 10 mM Tris HCl pH 8,0, 10
mM MgCl2, 5 mM -merkaptoetanol, 2 mM fluorek fenylometylosulfonowy
(PMSF)), w homogenizatorze Waringa cztery razy po 30 sekund. Homogenat przesączano
przez dwie warstwy gazy i jedną warstwę materiału do filtracji Miracloth (Calbiochem)
i wirowano przez 10 min, przy 10000 obrotów na min w temperaturze 4
C.
Osad zawieszano w 150 ml buforu II (0,25 M sacharoza, 10 mM Tris HCl, 10 MM
MgCl2, 1% Triton X-100, 2 mM ?-merkaptoetanol, 2 mM fluorek fenylometylosulfonowy
(PMSF)) w homogenizatorze Waringa prowadząc rozdrabnianie cztery razy po 15
sekund. Po ponownym wirowaniu w identycznych warunkach, osad przenoszono do
homogenizatora Pottera i ekstrahowano go przez dwie godziny na mieszadle magnetycznym
15 ml 0,4 M kwasu siarkowego. Próbki następnie wirowano (18000 obrotów na minutę,
30 min, 4
C), odrzucano osad, a wyekstrahowane białka z supernatantu
wytrącano na mieszadle magnetycznym przez noc 3,5 objętościami zimnego acetonu.
W dalszej kolejności preparaty poddawane były wirowaniu (18500 obrotów na minutę,
30 min), osad był suszony zimnym powietrzem i rozpuszczany w małej objętości
zimnej wody. W celu usunięcia kwasu i doczyszczenia, próbki poddawano przez
2 godziny dializie wobec wody. Po zatężeniu w wirówce próżniowej preparaty podlegały
rozdziałowi na żelu poliakrylamidowym.