Plazmidowe DNA z Agrobacterium tumefaciens (szczep LBA4404) izolowano na małą
skalę za pomocą zmodyfikowanej i udoskonalonej lizy alkalicznej. Agrobacterium
hodowane było w 20 - 40 ml pożywki płynnej YEB z odpowiednimi antybiotykami
selekcyjnymi (rifampicyna do stężenia końcowego 25
g/ml, i jeśli
było to potrzebne, kanamycyna do stężenia końcowego 50
g/ml, higromycyna
do stężenia końcowego 50
g/ml) z silnym wytrząsaniem przez 48 godzin
w temperaturze 28
C, po czym hodowla wirowano przy 5000 rpm przez
10 minut w temperaturze 4
C, pożywkę odrzucano, zaś pelet (osad) bakteryjny
zawieszano w 10 ml lodowatego 0,1% sarkozylu i ponownie odwirowywano jak poprzednio.
(Przemywanie sarkozylem umożliwia działanie lizozymu i usuwa resztki pożywki,
które mogłyby utrudniać trawienie restrykcyjne otrzymanego plazmidu). Osad odsączano
od śladów pożywki i zawieszano natychmiast w 500
l lodowatego buforu
I (100
g/ml RNaza A, 50 mM TrisHCl, 10 mM EDTA, pH 8,0) z dodanym
lizozymem z białka kurzego jaja (100
g/ml, Sigma). Do próbek dodawano
1 ml świeżo przygotowanego buforu do lizy alkalicznej (200 mM NaOH, 1% SDS)
i delikatnie mieszano, a następnie pozostawiano bakterie na 5 minut na lodzie
(liza alkaliczna). Po próbek dodawano 750
l buforu do neutralizacji
(7,5 M octan amonu) wysyconego zbuforowanym fenolem (pH 8,0), mocno wytrząsano
i po 15 minutowej inkubacji na lodzie zwirowywano przy 7000 rpm przez 10 minut
w 4
C. Supernatant ekstrahowano równą objętością mieszaniny chloroformu
i alkoholu izoamylowego (24:1) i zwirowywano przy 14000 x g przez 10 minut w
celu rozdziału fazy organicznej od wodnej. Ekstrakcję chloroformem:alkoholem
izoamylowym powtarzano przynajmniej jeden raz w celu usunięcia śladów fenolu,
po czym strącano DNA 2,5 objętościami 96% etanolu przez 20 minut w temperaturze
20
C. Następnie próbkę wirowano (13000 x g przez 20 minut, 4
C),
przemywano 70% etanolem, suszono osad strumieniem zimnego powietrza i zawieszano
DNA w 30
l buforu TE (10mM TrisHCl, pH 7,5; 1 mM EDTA).